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放射性配體治療藥物在臨床前生物樣本的LC-MS/MS分析研究進(jìn)展
更新時(shí)間：2025-06-20
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癌癥作為全球死亡的主要原因之一，根據(jù)美國(guó)癌癥協(xié)會(huì)的數(shù)據(jù)，癌癥仍然是美國(guó)死亡的第二大殺手，在2022年導(dǎo)致近600萬(wàn)人死亡。在過(guò)去的幾十年里，科學(xué)家和醫(yī)療專業(yè)人員一直在積極開展癌癥研究，尋求新的治療手段和預(yù)防措施。包括但不限于手術(shù)、化療、放療、靶向治療、基因治療和免疫治療。而放射性配體療法（Radioligand therapy, RLT）作為一種新型治療手段，近年來(lái)在癌癥的診斷、治療和監(jiān)測(cè)方面展現(xiàn)出了顯著的發(fā)展勢(shì)頭。作為晚期癌癥患者的一種精準(zhǔn)核醫(yī)學(xué)治療形式，RLT利用具有放射性的靶向藥物，即放射性配體，特異性結(jié)合癌細(xì)胞上所表達(dá)的受體，再以直接和精確的方式通過(guò)射線殺死癌細(xì)胞，同時(shí)保留周圍的健康組織。RLT的一個(gè)成功例子是Pluvicto（177Lu-PMSA-617），它是2022年被批準(zhǔn)的第一個(gè)前列腺特異性膜抗原靶向的放射性配體療法，在前列腺癌患者中展現(xiàn)了顯著的臨床療效。
放射性配體由四個(gè)部分組成：放射性同位素、靶向配體、連接子和螯合劑。高能放射性同位素，如α和β發(fā)射體，提供導(dǎo)致DNA損傷的輻射，通常用于癌癥治療，另一方面，γ射線因其能量非常微弱，但穿透能力強(qiáng)的特點(diǎn)適合用于開發(fā)SPECT（單光子發(fā)射計(jì)算機(jī)斷層成像）與PET（正電子發(fā)射斷層成像）用放射性診斷藥物。放射性同位素與螯合劑形成的金屬螯合物通過(guò)小分子連接子與靶向配體連接，而DOTA（1,4,7,10-四氮雜環(huán)十二烷-1,4,7,10-四乙酸）因其對(duì)許多放射性同位素具有高親和力和穩(wěn)定性而被廣泛用作螯合劑。
在核藥臨床前開發(fā)中，研究人員往往使用冷藥（放射性治療藥物的非放射性或衰變形式，例如，175Lu）作為熱藥（具有放射性，例如177Lu）替代物，在相對(duì)低的劑量水平下研究RLT候選藥物的安全性。臨床前安全性研究中使用的供試品包含冷藥（放射性治療藥物的非放射性或衰變形式，即ligand-linker-chelator with nonradioactive metal)和游離配體（即ligand-linker-chelator without metal)。在文獻(xiàn)“LC?MS/MS Bioanalysis of Radioligand Therapeutic Drug Candidate for Preclinical Toxicokinetic Assessment"的報(bào)道中，諾華的研究人員開發(fā)了一種高選擇性和高靈敏度的旨在檢測(cè)動(dòng)物血漿樣品中游離配體（NVS001）和冷藥（175Lu-NVS001）的LC?MS/MS方法。
一般來(lái)說(shuō)，具有螯合結(jié)構(gòu)的化合物在液相分析往往容易與儀器不銹鋼管路或者色譜柱不銹鋼管壁發(fā)生作用，導(dǎo)致峰形異常、靈敏度下降或重現(xiàn)性欠佳等問題，除此以外，多肽也容易與樣品容器或者內(nèi)源性蛋白發(fā)生非特異性吸附。因而文獻(xiàn)中所提到的分析挑戰(zhàn)有：
未鰲合配體藥物NVS001靈敏度差
未鰲合配體藥物NVS001易與內(nèi)源性金屬離子如鉀形成復(fù)合物
66Ga標(biāo)記的內(nèi)標(biāo)在樣品提取和分析過(guò)程中出現(xiàn)66Ga離子流失
待測(cè)物在低濃度不穩(wěn)定
血樣提取樣品中內(nèi)標(biāo)響應(yīng)不一致
EDTA在液相分析中作為流動(dòng)相添加劑中的一種，往往用作類似金屬屏蔽劑的作用，來(lái)改善具有螯合結(jié)構(gòu)的化合物峰形和靈敏度問題，在該研究中，我們不僅可以看到在流動(dòng)相中做了類似的添加，而且在樣品的前處理過(guò)程中同樣使用到了EDTA。
色譜柱：C18, 100 × 2.1 mm 1.8 μm
流動(dòng)相A：40 mM碳酸氫銨水溶液(含20 µM EDTA和0.04%氨水)
流動(dòng)相B：甲醇
柱溫：40℃
流速：0.6 mL/min
進(jìn)樣體積：10~20 µL (EDTA和氨水添加到乙腈/甲醇 (50:50, V/V)洗針液以減少殘留)
檢測(cè)器：LC?MS/MS 正離子模式
NVS001: m/z 443.9 → 292.3
175Lu-NVS001: 529.9 → 421.3
66Ga-NVS001: 476.9 → 368.3
NVS001和175Lu-NVS001 (0.2 mg/mL) 儲(chǔ)備液配置：乙腈/DMSO (30/70, V/V)，用甲醇/水 (50/50, V/V, 含0.1%甲酸和10 µM EDTA )作稀釋劑配置0.01~5 µg/mL溶液
66Ga-NVS001內(nèi)標(biāo)工作液 (15 ng/mL) ：將內(nèi)標(biāo)儲(chǔ)備液 (0.1mg/mL)用甲醇/水 (50/50, V/V, 含0.1%甲酸和10 µM EDTA )稀釋配置
上述所有溶液均置于PP管中于2-8℃保存
校準(zhǔn)曲線和QC樣品配置：將適量濃度為0.01~5 µg/mL的NVS001和175Lu-NVS001標(biāo)液與1%磷酸處理的血漿樣品按1:24 (V/V) 分別配置成0.500, 1.00, 3.00, 10.0, 25.0, 100, 200, 250 ng/mL的校準(zhǔn)曲線樣品；QC樣品濃度分別為0.500, 1.50, 10.0, 100, 190 ng/mL；所有QC樣置于PP小瓶中≤?70 °C保存
所有校準(zhǔn)標(biāo)樣，QC樣和待測(cè)樣品均置于低溫（wet ice）中解凍和處理
向96孔板中分別加入25 µL空白血漿，校準(zhǔn)標(biāo)樣，QC樣和待測(cè)樣品；再向除基質(zhì)空白樣以外的所有孔中加入25 µL 66Ga-NVS001內(nèi)標(biāo)工作液 (15 ng/mL) ；基質(zhì)空白樣則加入25 µL甲醇/水 (50/50, V/V, 含0.1%甲酸和10 µM EDTA )
向所有孔中加入300 µL蛋白沉淀試劑 (25:25:50 [V/V/V], 丙酮/乙腈/甲醇含0.2%甲酸和20 µM Na2EDTA ，渦旋10min后1640×g 離心5min
取300 µL上清液轉(zhuǎn)移至含10 µL 異丙醇/丙二醇 (50:50 [V/V])，渦旋后于30℃下氮吹至盡干，最后用150 µL甲醇/水 (25:75 (V/V) 含0.1%甲酸和10 µM Na2EDTA)，渦旋10min后進(jìn)樣分析
沉淀試劑優(yōu)化過(guò)程：
純乙腈作為沉淀試劑無(wú)法獲得良好的NVS001 和 175Lu-NVS001回收率
替換為純甲醇可實(shí)現(xiàn)理想的回收率，但同時(shí)帶來(lái)基線背景升高和干擾峰的問題
Na2EDTA和甲酸的加入可有效防止內(nèi)標(biāo)工作液中66Ga的丟失
犬血樣品提取后內(nèi)標(biāo)響應(yīng)偏差較大（大鼠血樣表現(xiàn)正常），經(jīng)過(guò)優(yōu)化，25%丙酮的加入和至少10min的蛋白沉淀渦旋有助于確保內(nèi)標(biāo)響應(yīng)的一致性；同時(shí)，將Na2EDTA和甲酸的添加濃度由10 µM和0.1%分別增加至20 µM和0.2%有助于消除由上述操作帶來(lái)的內(nèi)標(biāo)66Ga流失的問題
NVS001: m/z 443.9 → 292.3進(jìn)溶劑標(biāo)樣或者血漿提取樣品響應(yīng)都不及預(yù)期，進(jìn)一步考察顯示，NVS001易與鉀離子形成復(fù)合物 (K-NVS001, m/z 462.9 → 310.3 )；中濃度QC提取樣品，含NVS001和175Lu-NVS001各100 ng/mL，流動(dòng)相未添加20 µM Na2EDTA可觀察到明顯的K-NVS001峰，175Lu-NVS001和66Ga-NVS001的響應(yīng)并未受到添加Na2EDTA的影響（Figure 2）。
通常DOTA和大多數(shù)三價(jià)金屬離子如GaIII and LuIII的配合物在室溫下是穩(wěn)定的，但是在以下情形易出現(xiàn)金屬離子的丟失：
與內(nèi)源性金屬離子發(fā)生交換
堿性條件下易形成氫氧化物 (即 [Ga(OH)4]? ）
面臨問題
通過(guò)考察NVS001在溶劑標(biāo)樣和175Lu-NVS001加標(biāo)血樣 (250ng/mL) 的響應(yīng)，并未發(fā)現(xiàn)175Lu-NVS001向NVS001的轉(zhuǎn)化，表明Lu-DOTA配合物穩(wěn)定性良好
對(duì)只含66Ga-NVS001加標(biāo)的空白血樣采用甲醇/乙腈 (50:50, V/V) 提取分析，觀察到明顯的NVS001峰（如Figure S-1-A所示）；然而對(duì)于只含66Ga-NVS001的溶劑標(biāo)樣，即使采用相同的提取步驟，卻并未觀察到該現(xiàn)象，表明66Ga流失更大可能是由于基質(zhì)中存在的金屬離子
解決方案
向內(nèi)標(biāo)工作液和蛋白沉淀試劑加入10 µM Na2EDTA，同時(shí)加入0.1%甲酸以避免66Ga的氫氧化物形成，如Figure S-1-B所示，66Ga-NVS001加標(biāo)的空白血樣提取后分析可觀察到NVS001峰響應(yīng)出現(xiàn)10倍降低，但是，其峰面積仍高于對(duì)應(yīng)LLOQ的20%
進(jìn)一步優(yōu)化：
1）小體積異丙醇/丙二醇 (50:50 [V/V])加入到蛋白沉淀后的上清液以避免吹干；
2）將氮吹溫度從40℃降至30℃。經(jīng)過(guò)優(yōu)化，如Figure S-1-C所示，NVS001峰未再檢出
簡(jiǎn)而言之，EDTA不僅在LC-MS/MS流動(dòng)相，而且在樣品前處理鰲合基質(zhì)和系統(tǒng)中的游離金屬離子方面發(fā)揮重要作用；同時(shí)，維持酸性環(huán)境體系和優(yōu)化氮吹條件，都對(duì)在樣品提取過(guò)程中消除內(nèi)標(biāo) 66Ga-NVS001中Ga的流失具有重要意義。
分別考察冰袋保存的QC樣本低濃度(1.5 ng/mL) 和高濃度(190 ng/mL) NVS001 and 175Lu-NVS001的24h穩(wěn)定性
低濃度(1.5 ng/mL) QC樣本在冰袋保存24h后分析， NVS001 和 175Lu-NVS001在大鼠血漿和犬血漿的回收率分別只有8%和20%，低濃度(190 ng/mL) 并未觀察到此現(xiàn)象，同時(shí)，校準(zhǔn)曲線藥品低濃度也出現(xiàn)偏低而影響線性的情況
由于多肽部分和進(jìn)樣小瓶及96孔板的非特異性吸附，或者與生物基質(zhì)中內(nèi)源性蛋白的結(jié)合，從而在樣品轉(zhuǎn)移和蛋白沉淀過(guò)程中出現(xiàn)待測(cè)物的損失
然而，低吸附進(jìn)樣小瓶和96孔板的使用并未改善低濃度樣品的回收率問題
進(jìn)一步考察樣品管轉(zhuǎn)移的影響：將含NVS001 和 175Lu-NVS001各4 ng/mL的樣品依次在樣品管間轉(zhuǎn)移,每次轉(zhuǎn)移前先渦旋1min,然后在冰袋保存5min以保證吸附，LC-MS/MS分析結(jié)果如Figure S-2所示,未有明顯非特異性吸附
樣品和內(nèi)源性組分的吸附干擾考察：低濃度QC樣本分別用抗壞血酸、磷酸和乳酸處理，然后置于冰袋和室溫環(huán)境下24h,結(jié)果顯示,抗壞血酸處理回收率(30-60%)，磷酸或乳酸處理回收率(80-100%)。綜合評(píng)估，血漿樣本采用20%磷酸溶液按20:1(V/V)進(jìn)行處理
從文獻(xiàn)所報(bào)道的整個(gè)方法開發(fā)過(guò)程可以看到，該LC-MS/MS生物分析方法具有高選擇性和高靈敏度的優(yōu)點(diǎn)，能夠基于25μL樣品體積的條件下在0.5-250ng/mL濃度范圍內(nèi)用于同時(shí)測(cè)定大鼠和犬血漿中的游離配體（NVS001）和冷藥（175Lu-NVS001）。同時(shí)表明向流動(dòng)相中添加螯合劑EDTA可以顯著提高游離配體NVS001的靈敏度，同時(shí)最大限度避免了NVS001與樣品基質(zhì)中的金屬離子(例如K)形成螯合物影響分析結(jié)果。另外，向包括內(nèi)標(biāo)工作液、蛋白沉淀劑和復(fù)溶液在內(nèi)的眾多溶劑中引入EDTA和甲酸有助于最大限度地減少樣品提取過(guò)程中內(nèi)標(biāo)66Ga的流失；同時(shí)采取相對(duì)溫和的氮吹條件可進(jìn)一步避免66Ga的流失。而用1%磷酸預(yù)處理血漿樣品則能有效防止低濃度下待測(cè)物與內(nèi)源性蛋白質(zhì)結(jié)合而導(dǎo)致的結(jié)果“不穩(wěn)定性"發(fā)生。此外，在蛋白沉淀劑中加入一定體積的丙酮也有助于獲得一致的內(nèi)標(biāo)響應(yīng)。更多的研究也表明，該LC-MS/MS工作分析流可擴(kuò)展至其他放射性配體藥物在生物樣品中的的定量分析，從而支持臨床前RLT藥物的開發(fā)。
站在不同的視角來(lái)看，除了從所使用的溶劑和流動(dòng)相中添加EDTA來(lái)避免上述文獻(xiàn)中所遇到的分析問題，惰性的儀器管路以及惰性的色譜柱柱管及篩板（例如鈦合金材質(zhì)）是不是可以從另外一個(gè)維度來(lái)優(yōu)化和解決這類問題呢，再延展到具有放射性的熱藥的分析，普通的不銹鋼色譜柱和鈦合金材質(zhì)的色譜柱在進(jìn)樣具有放射性的藥物的分析過(guò)程中，柱管內(nèi)表面是否會(huì)發(fā)生不一樣的變化，繼而影響到峰形、回收率等分析結(jié)果呢，相信隨著更多關(guān)于放射性核素偶聯(lián)藥物的研究進(jìn)展，我們對(duì)于核藥色譜分析所遇到的難題會(huì)逐漸解開。
關(guān)于鈦合金材質(zhì)色譜柱
LC?MS/MS Bioanalysis of Radioligand Therapeutic Drug Candidate for Preclinical Toxicokinetic Assessment. Anal. Chem. 2023, 95, 10812?10819.
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關(guān)注公眾號(hào)
